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    瓊脂糖電泳槽使用全攻略:從制膠到跑膠的關(guān)鍵技巧與常見問題解析

    更新時間:2025-06-18    點擊次數(shù):1121

      瓊脂糖電泳槽使用全攻略:從制膠到跑膠的關(guān)鍵技巧與常見問題解析

      以下是天津本生技術(shù)小編對瓊脂糖電泳從制膠到跑膠的全流程操作指南及問題解決方案:

      一、?制膠關(guān)鍵技巧?

      凝膠濃度選擇?

      0.7%-1%膠適用于1-20kb大片段DNA,2%膠用于50-1000bp小片段;

      RNA分析建議使用變性瓊脂糖凝膠(如含甲醛)。

      緩沖液配置?

      TAE緩沖液適合快速電泳(大片段分離),TBE緩沖液分辨率更高(小片段分離);

      緩沖液需現(xiàn)配現(xiàn)用,重復(fù)使用會導(dǎo)致pH上升、條帶模糊。

      制膠操作?

      微波加熱瓊脂糖至透明(避免局部沸騰),冷卻至60℃再加核酸染料(如GelRed);

      倒膠時緩慢傾斜模具,避免氣泡產(chǎn)生,梳子垂直插入距底板1mm處。



      二、?電泳運行優(yōu)化?

      上樣規(guī)范?

      DNA與Loading Buffer按4:1混合,上樣量≤孔容積80%(避免溢出);

      Marker需預(yù)沉降5分鐘再通電,防止條帶歪斜。

      電泳參數(shù)?

      電壓設(shè)置:5-10V/cm(膠長度),>20V/cm易致條帶擴散;

      溫度控制:常規(guī)DNA電泳<30℃,長片段(>10kb)建議<15℃。

      緩沖液管理?

      液面需覆蓋凝膠1-2mm,過低會導(dǎo)致條帶扭曲;

      鉑金電極需定期用蒸餾水清洗,防止鹽結(jié)晶腐蝕。

      三、?常見問題解析?

      問題現(xiàn)象? ?原因分析? ?解決方案?

      條帶模糊/拖尾 DNA降解、緩沖液陳舊或上樣過量 更換緩沖液,減少上樣量,避免核酸酶污染

      帶扭曲 電場不均或梳子拔出不規(guī)范 預(yù)電泳5分鐘(低電壓),垂直緩慢拔梳子

      無條帶顯示 電極接觸不良或DNA未染色 檢查電極連接,確認染料活性

      背景熒光雜斑 制膠雜質(zhì)或紫外照射過久 過濾瓊脂糖溶液,縮短紫外觀察時間

      四、?設(shè)備維護建議?

      每次使用后需用蒸餾水沖洗槽體及電極,避免緩沖液殘留腐蝕;

      長期存放時拆卸梳子與模具,防止塑料變形。

      通過規(guī)范操作與針對性優(yōu)化,可顯著提升電泳結(jié)果的可重復(fù)性。

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      BS-600C    通用型電泳儀電源

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      BS-mini04  垂直電泳槽(四板)

      BS-ZY03  轉(zhuǎn)印電泳槽(WB雙板和鉑樂通用)

      BS-ZY04  轉(zhuǎn)印電泳槽 (WB四板)

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      注:以上資料僅供參考,具體請咨詢技術(shù)老師。

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